Występowanie dotychczas niemonitorowanych wirusów (HpLV, ArMV) i wiroidów (HpSVd, AFCVd, CBCVd) na plantacjach produkcyjnych chmielu w Polsce
dr Marcin Przybyś
mprzybys@iung.pulawy.plInstytut Uprawy Nawożenia i Gleboznawstwa — Państwowy Instytut Badawczy, Puławy (Poland)
Urszula Skomra
Instytut Uprawy Nawożenia i Gleboznawstwa — Państwowy Instytut Badawczy, Puławy (Poland)
Grażyna Korbecka-Glinka
Instytut Uprawy Nawożenia i Gleboznawstwa — Państwowy Instytut Badawczy, Puławy (Poland)
Instytucje finansujące
Prace zostały wykonane w ramach badań podstawowych na rzecz postępu biologicznego w produkcji roślinnej na podstawie decyzji Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi nr HOR.hn.802.11.2018, Zadanie 107.
Słowa kluczowe:
AFCVd, ArMV, CBCVd, chmiel, HpLV, HpSVd, wirusyBibliografia
Adams A. N., Barbara D. J. 1982. Host range, purification and some properties of two Carla viruses from hop (Humulus lupulus): hop latent and American hop latent. Ann. Appl. Biol. 101 (3): 483 — 494.
Crowle D. R., Pethybridge S. J., Wilson C. R. 2006. Transmission of hop latent and hop mosaic carlaviruses by Macrosiphum euphorbiae and Myzus persicae. J. Phytopathol. 154: 745 — 747.
Diener T. O., Smith D. R., Hammond R. H., Albanese G., Larosa R., Davino M. 1988. Citrus-B viroid identified as a strain of hop stunt viroid. Plant Dis. 72: 691 — 693.
Eastwell K. C., Nelson, M. E. 2007. Occurrence of viroids in commercial hop (Humulus lupulus L.) production areas of Washington State. Online. Plant Health Progress, DOI: 10.109/PHP2007-1127-01-RS.
Eppler A. 1989. Presence of viruses in the hop growing region of Alsace (France). Page 209 in: Proc. Int. Workshop Hop Virus Dis. Giessen.
Hay F. S., Close R. C., Fletcher J. D., Ashby J. W. 1992. Incidence and spread of viruses in hop (Humulus lupulus L.) in New Zealand. N.Z. J. Crop Hortic. Sci. 20:319 — 327.
Kanno Y., Yoshikawa N., Takahashi T. 1993. Some properties of hop latent and apple mosaic viruses isolated from hop plants and their distributions in Japan. Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 59: 651 — 658.
Lee J. Y., Lee S. H., Sänger H. L. 1990. Viroid diseases occurring on Korean hop plants. Korean J Plant Pathol., 6: 256 — 260.
Matoušek J., Orctová L., Patzak J., Svoboda P., Ludvíková I. 2003. Molecular sampling of hop stunt viroid (HSVd) from grapevines in hop production areas in the Czech Republic and hop protection. Plant, Soil Environ. 49 (4): 168 — 175.
Pethybridge S. J., Hay F. S., Barbara D. J., Eastwell K. C., Wilson C. R. 2008. Viruses and Viroids Infecting Hop: Significance, Epidemiology, and Management, Plant Dis. 92 (3): 324 — 338.
Pethybridge S. J., Wilson C. R., Sherriff L. J., Leggett G. W., Munro D. 2000. Virus incidence in Australian hop (Humulus lupulus L.) gardens and cultivar differences in susceptibility to infection. Aust. J. Agric. Res. 51: 685 — 689.
Radisek S., Majer A., Jakse J., Javornik B., Matoušek J. 2012. First Report of Hop stunt viroid Infecting Hop in Slovenia, Dis. Notes 96 (4): 592.
Sano T. 2003. Hop stunt viroid. In: Hadidi A, Flores R., Randles J. W., Semancik J. S. (eds.): Viroids. Collingwood, Australia, CSIRO Press: 207 — 212.
Sano T., Hataya T., Terai Y., Shikata E. 1989. Hop stunt viroid strains from dapple fruit disease of plum and peach in Japan. J. Gen. Virol., 70: 1311 — 1319.
Schmidt H. E. 1966. Mechanical transmission of a rod-shaped Hop virus to herbaceous test plants. Zentralbl. Bakteriol. B 120: 461 — 466.
Shuman S. 2002. What messenger RNA capping tells us about eukaryotic evolution. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3: 619 — 625.
Tsai C. W., Daugherty M. P., Almeida R .P. P. 2012. Seasonal dynamics and virus translocation of grapevine leafroll-associated virus 3 in grapevine cultivars. Plant Pathol. 61: 977 — 985.
Von Weschmar W. B., Brits G., Coleman T. 1989. Viruses in hops and aspects of virus epidemiology and hop production in South Africa at 34° southern latitude. Proc. Int. Workshop Hop Virus Dis. Giessen: 33 — 42.
Wetzel T., Jardak R., Meuniera L., Ghorbel A., Reustle G. M., Krczal G. 2002. Simultaneous RT/PCR detection and differentiation of arabis mosaic and grapevine fanleaf nepoviruses in grapevines with a single pair of primers. J. Virol. Methods 101 (1–2): 63 — 69.
Yamamoto H., Kagami Y., Kurokawa M., Nishimura S., Ukawa S., Kubo S. 1973. Studies on hop stunt disease in Japan. Rep. Res. Lab. Kirin Brewery Co., Ltd. 16: 49 — 62.
Yu J., Liu Y. 1987. The occurrence of three viruses in hop (Humulus lupulus L.) in China. Plant Pathol. 36: 38 — 44.
Ziegler A., Kawka M., Przybys M., Doroszewska T., Skomra U., Kastirr U., Matoušek J., Schubert J. 2014. Detection and molecular analysis of Hop latent virus and Hop latent viroid in hop samples from Poland. Journal für Kultur Pflanzen 66 (7): 248 — 254. Google Scholar
Crowle D. R., Pethybridge S. J., Wilson C. R. 2006. Transmission of hop latent and hop mosaic carlaviruses by Macrosiphum euphorbiae and Myzus persicae. J. Phytopathol. 154: 745 — 747.
Diener T. O., Smith D. R., Hammond R. H., Albanese G., Larosa R., Davino M. 1988. Citrus-B viroid identified as a strain of hop stunt viroid. Plant Dis. 72: 691 — 693.
Eastwell K. C., Nelson, M. E. 2007. Occurrence of viroids in commercial hop (Humulus lupulus L.) production areas of Washington State. Online. Plant Health Progress, DOI: 10.109/PHP2007-1127-01-RS.
Eppler A. 1989. Presence of viruses in the hop growing region of Alsace (France). Page 209 in: Proc. Int. Workshop Hop Virus Dis. Giessen.
Hay F. S., Close R. C., Fletcher J. D., Ashby J. W. 1992. Incidence and spread of viruses in hop (Humulus lupulus L.) in New Zealand. N.Z. J. Crop Hortic. Sci. 20:319 — 327.
Kanno Y., Yoshikawa N., Takahashi T. 1993. Some properties of hop latent and apple mosaic viruses isolated from hop plants and their distributions in Japan. Ann. Phytopathol. Soc. Jpn. 59: 651 — 658.
Lee J. Y., Lee S. H., Sänger H. L. 1990. Viroid diseases occurring on Korean hop plants. Korean J Plant Pathol., 6: 256 — 260.
Matoušek J., Orctová L., Patzak J., Svoboda P., Ludvíková I. 2003. Molecular sampling of hop stunt viroid (HSVd) from grapevines in hop production areas in the Czech Republic and hop protection. Plant, Soil Environ. 49 (4): 168 — 175.
Pethybridge S. J., Hay F. S., Barbara D. J., Eastwell K. C., Wilson C. R. 2008. Viruses and Viroids Infecting Hop: Significance, Epidemiology, and Management, Plant Dis. 92 (3): 324 — 338.
Pethybridge S. J., Wilson C. R., Sherriff L. J., Leggett G. W., Munro D. 2000. Virus incidence in Australian hop (Humulus lupulus L.) gardens and cultivar differences in susceptibility to infection. Aust. J. Agric. Res. 51: 685 — 689.
Radisek S., Majer A., Jakse J., Javornik B., Matoušek J. 2012. First Report of Hop stunt viroid Infecting Hop in Slovenia, Dis. Notes 96 (4): 592.
Sano T. 2003. Hop stunt viroid. In: Hadidi A, Flores R., Randles J. W., Semancik J. S. (eds.): Viroids. Collingwood, Australia, CSIRO Press: 207 — 212.
Sano T., Hataya T., Terai Y., Shikata E. 1989. Hop stunt viroid strains from dapple fruit disease of plum and peach in Japan. J. Gen. Virol., 70: 1311 — 1319.
Schmidt H. E. 1966. Mechanical transmission of a rod-shaped Hop virus to herbaceous test plants. Zentralbl. Bakteriol. B 120: 461 — 466.
Shuman S. 2002. What messenger RNA capping tells us about eukaryotic evolution. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3: 619 — 625.
Tsai C. W., Daugherty M. P., Almeida R .P. P. 2012. Seasonal dynamics and virus translocation of grapevine leafroll-associated virus 3 in grapevine cultivars. Plant Pathol. 61: 977 — 985.
Von Weschmar W. B., Brits G., Coleman T. 1989. Viruses in hops and aspects of virus epidemiology and hop production in South Africa at 34° southern latitude. Proc. Int. Workshop Hop Virus Dis. Giessen: 33 — 42.
Wetzel T., Jardak R., Meuniera L., Ghorbel A., Reustle G. M., Krczal G. 2002. Simultaneous RT/PCR detection and differentiation of arabis mosaic and grapevine fanleaf nepoviruses in grapevines with a single pair of primers. J. Virol. Methods 101 (1–2): 63 — 69.
Yamamoto H., Kagami Y., Kurokawa M., Nishimura S., Ukawa S., Kubo S. 1973. Studies on hop stunt disease in Japan. Rep. Res. Lab. Kirin Brewery Co., Ltd. 16: 49 — 62.
Yu J., Liu Y. 1987. The occurrence of three viruses in hop (Humulus lupulus L.) in China. Plant Pathol. 36: 38 — 44.
Ziegler A., Kawka M., Przybys M., Doroszewska T., Skomra U., Kastirr U., Matoušek J., Schubert J. 2014. Detection and molecular analysis of Hop latent virus and Hop latent viroid in hop samples from Poland. Journal für Kultur Pflanzen 66 (7): 248 — 254. Google Scholar
Przybyś, M. ., Skomra, U. . i Korbecka-Glinka, G. . (2019) „Występowanie dotychczas niemonitorowanych wirusów (HpLV, ArMV) i wiroidów (HpSVd, AFCVd, CBCVd) na plantacjach produkcyjnych chmielu w Polsce”, Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin, (286), s. 371–374. doi: 10.37317/biul-2019-0082.
Autorzy
dr Marcin Przybyśmprzybys@iung.pulawy.pl
Instytut Uprawy Nawożenia i Gleboznawstwa — Państwowy Instytut Badawczy, Puławy Poland
Autorzy
Urszula SkomraInstytut Uprawy Nawożenia i Gleboznawstwa — Państwowy Instytut Badawczy, Puławy Poland
Autorzy
Grażyna Korbecka-GlinkaInstytut Uprawy Nawożenia i Gleboznawstwa — Państwowy Instytut Badawczy, Puławy Poland
Statystyki
Abstract views: 107PDF downloads: 147
Licencja
Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa – Na tych samych warunkach 4.0 Miedzynarodowe.
Z chwilą przekazania artykułu, Autorzy udzielają Wydawcy niewyłącznej i nieodpłatnej licencji na korzystanie z artykułu przez czas nieokreślony na terytorium całego świata na następujących polach eksploatacji:
- Wytwarzanie i zwielokrotnianie określoną techniką egzemplarzy artykułu, w tym techniką drukarską oraz techniką cyfrową.
- Wprowadzanie do obrotu, użyczenie lub najem oryginału albo egzemplarzy artykułu.
- Publiczne wykonanie, wystawienie, wyświetlenie, odtworzenie oraz nadawanie i reemitowanie, a także publiczne udostępnianie artykułu w taki sposób, aby każdy mógł mieć do niego dostęp w miejscu i w czasie przez siebie wybranym.
- Włączenie artykułu w skład utworu zbiorowego.
- Wprowadzanie artykułu w postaci elektronicznej na platformy elektroniczne lub inne wprowadzanie artykułu w postaci elektronicznej do Internetu, lub innej sieci.
- Rozpowszechnianie artykułu w postaci elektronicznej w internecie lub innej sieci, w pracy zbiorowej jak również samodzielnie.
- Udostępnianie artykułu w wersji elektronicznej w taki sposób, by każdy mógł mieć do niego dostęp w miejscu i czasie przez siebie wybranym, w szczególności za pośrednictwem Internetu.
Autorzy poprzez przesłanie wniosku o publikację:
- Wyrażają zgodę na publikację artykułu w czasopiśmie,
- Wyrażają zgodę na nadanie publikacji DOI (Digital Object Identifier),
- Zobowiązują się do przestrzegania kodeksu etycznego wydawnictwa zgodnego z wytycznymi Komitetu do spraw Etyki Publikacyjnej COPE (ang. Committee on Publication Ethics), (http://ihar.edu.pl/biblioteka_i_wydawnictwa.php),
- Wyrażają zgodę na udostępniane artykułu w formie elektronicznej na mocy licencji CC BY-SA 4.0, w otwartym dostępie (open access),
- Wyrażają zgodę na wysyłanie metadanych artykułu do komercyjnych i niekomercyjnych baz danych indeksujących czasopisma.
Inne teksty tego samego autora
- Urszula Skomra, Ocena materiałów hodowlanych chmielu zwyczajnego pod względem odporności na mączniaka prawdziwego , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 244 (2007): Wydanie regularne
- Marta Koziara, Urszula Skomra, Wpływ terminu zbioru i warunków przechowywania na zawartość olejków eterycznych w szyszkach różnych odmian chmielu , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 283 (2018): Wydanie specjalne
- Urszula Skomra, Marcin Przybyś, Porównanie metody polowej i laboratoryjnej oceny odporności chmielu na mączniaka prawdziwego (Podosphaera macularis) , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 252 (2009): Wydanie regularne
- Marta Koziara, Urszula Skomra, Stabilność kwasów goryczkowych chmielu w zależności od odmiany, stopnia dojrzałości oraz warunków przechowywania szyszek , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 283 (2018): Wydanie specjalne
- Urszula Skomra, Kolekcja rodzaju Humulus w IUNG — PIB w Puławach , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 283 (2018): Wydanie specjalne
Podobne artykuły
- mgr inż. Dorota Michałowska , Agnieszka Przewodowska, Włodzimierz Przewodowski, Paulina Buryło , Eliminacja patogenów niekwarantannowych (bakterie endogenne i wirusy) oraz kontrola zdrowotności roślin ziemniaka w banku in vitro , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 286 (2019): Wydanie specjalne
- dr Beata Tatarowska , Bogdan Flis, Iwona Wasilewicz-Flis, Wyróżnianie i charakterystyka tetraploidalnych form ziemniaka odpornych na wirusy M i S ziemniaka z wykorzystaniem selekcji metodami konwencjonalnymi i markerami molekularnymi , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 286 (2019): Wydanie specjalne
- Michał Kostiw, Nasiennictwo ziemniaka w Polsce: uwarunkowania przyrodnicze, odmianowe i rynkowe , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 268 (2013): Wydanie regularne
- Mirosława Chrzanowska, Krystyna Michalak, Helena Zagórska, Katarzyna Szajko, Reakcja na wirusy odmian ziemniaka znajdujących się w Krajowym Rejestrze w 2010 roku , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 260/261 (2011): Wydanie regularne
- Michał Kostiw, Barbara Robak, Presja wirusów Y, M, S i liściozwoju ziemniaka w latach 2006–2008 w Boninie , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 256 (2010): Wydanie regularne
- Maria Pytlarz-Kozicka, Porównanie produkcji nasiennej ziemniaka w systemie ekologicznym i konwencjonalnym , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 255 (2010): Wydanie regularne
- Dariusz R. Mańkowski, Zbigniew Laudański, Postęp biologiczny w hodowli, nasiennictwie i produkcji ziemniaka w Polsce. Część IV. Ocena postępu odmianowego pod względem odporności na patogeny , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 254 (2009): Wydanie regularne
Możesz również Rozpocznij zaawansowane wyszukiwanie podobieństw dla tego artykułu.
