Ocena wzrostu i stabilności genetycznej agrestu (Ribes grossularia L.) rozmnażanego in vitro oraz ex vitro
Danuta Kucharska
danuta.kucharska@inhort.plInstytut Ogrodnictwa, Zakład Biologii Stosowanej, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3 96‒100 Skierniewice (Poland)
http://orcid.org/0000-0002-9635-967X
Danuta Wójcik
Instytut Ogrodnictwa, Zakład Biologii Stosowanej, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3 96‒100 Skierniewice (Poland)
https://orcid.org/0000-0002-3556-8080
Aleksandra Trzewik
Instytut Ogrodnictwa, Zakład Biologii Stosowanej, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3 96‒100 Skierniewice (Poland)
https://orcid.org/0000-0003-0378-5440
Abstrakt
Celem badań była ocena fenotypowa i genetyczna roślin 15 genotypów agrestu, rozmnożonych in vitro oraz ex vitro przez sadzonki zielne, uprawianych drugi rok warunkach polowych. Silniej rosły krzewy rozmnożone in vitro. Ich wysokość i liczba pędów były istotnie większe dla 11 genotypów, a szerokość dla 12 genotypów agrestu. Krzewów, na których pojawiły się owoce było znacznie więcej u roślin mnożonych tradycyjnie. Przeprowadzono analizę stabilności genetycznej klonów pochodzących z kultur in vitro pięciu odmian agrestu. Analizowano 13‒15 roślin z in vitro oraz rośliny mateczne. Liczba produktów generowanych przez pary starterów AFLP wahała się od 33 do 108. Najwyższą całkowitą liczbę produktów amplifikacji uzyskano w wyniku reakcji AFLP dla roślin ‘Hinnonmaki Rot’ (300), a najmniejszą dla odmiany ‘Hinsel’ i ‘Resika’ (262). Zmienność genetyczna w roślinach agrestu in vitro wahała się od 1,03% dla ‘Captivator’ do 10,3% w przypadku ‘Hinsel’. Stabilność genetyczną oceniano także przy użyciu markerów ISSR. Wykorzystano rośliny 5 genotypów pochodzące z rozmnażania tradycyjnego oraz in vitro. Uzyskano łącznie 2294 produktów amplifikacji, z czego 2,8% było polimorficznych. Wielkość otrzymanych produktów wynosiła od 250 do 2900 pz, w zależności od startera i odmiany. Analiza ISSR-PCR wskazała na różny stopień polimorfizmu – od 0 dla ‘Hinnonmaki Rot’ i ‘Resica’ do 11,6% dla odmiany ‘Hinsel’.
Instytucje finansujące
Słowa kluczowe:
AFLP, agrest, DNA, ISSR, kultury in vitro, polimorfizmBibliografia
Bahulikar R.A., Stanculescu D., Preston C.A., Baldwin I.T. 2004. ISSR and AFLP analysis of the temporal and spatial population structure of the post-fire annual, Nicotiana attenuata, in SW Utah. BMC Ecol. 4: 12.
Google Scholar
Cavanna M., Marinoni D.T., Beccaro G.L., Bounous G. 2009. Microsatellite-based evaluation of Ribes spp. germplasm. Genome 52(10): 839-848.
Google Scholar
Costa R., Pereira G., Garrido I., Tavares-deSousa M.M., Espinosa F. 2016. Comparison of RAPD, ISSR, and AFLP molecular markers to reveal and classify orchardgrass (Dactylis glomerata L.) germplasm variations. PLoS ONE 11(4): e0152972. doi:10.1371/journal. pone.0152972.
Google Scholar
Drew R.A., Smith M.K. (1990): Field evaluation of tissuecultured bananas in south-eastern Queensland. Austr. J. Exp. Agric., 30: 569–574.
Google Scholar
Dubois L.A.M., Roggermans J., Soyeurt G., de Vries D.P. (1988): Comparison of the growth and development of dwarf rose cultivars propagated in vitro and in vivo by softwood cuttings. Sci. Hortic., 55: 293–299.
Google Scholar
Howard B.H., Jones O.P., Vasek J. (1989): Long-term improvement in the rooting of plum cuttings following apparent rejuvenation. J. Hort. Sci., 64: 147–156.
Google Scholar
Korbin M., Kuras A., Żurawicz E. 2002. Fruit plant germplasm characterisation using molecular markers generated in RAPD and ISSR-PCR. Cell. Mol. Biol. Lett. 7(2B): 785-94.
Google Scholar
Kucharska D., Orlikowska T., Maciorowski R., Kunka M., Wójcik D., Pluta S. 2020. Application of meta-topolin for improving micropropagation of gooseberry (Ribes grossularia). Sci. Hort., 272: 109529. https://doi. org/10.1016/j.scienta.2020.109529
Google Scholar
Kumar A., Misra P., Dube A. 2013. Amplified fragment length polymorphism: an adept technique for genome mapping, genetic differentiation, and intraspecific variation in protozoan parasites. Parasitol. Res. 112: 457-466.
Google Scholar
Lanham P.G., Brennan R.M. 1999a. Genetic characterization of gooseberry (Ribes grossularia subgenus Grossularia) germplasm using RAPD, ISSR and AFLP markers. J. Hort. Sci. Biotech. 74(3): 361-366.
Google Scholar
Lanham P.G., Brennan R.M. 1999b. Genetic characterisation of Ribes nigrum, Ribes rubrum and Ribes grossularia. Acta Hort. 505: 385-392.
Google Scholar
Lanham P.G., Brennan R.M. 2001. Genetic diversity in Ribes. Acta Hort. 546: 135-137.
Google Scholar
Meudt H.M., Clarke A.C. 2007. Almost forgotten or latest practice? AFLP applications, analyses and advances. Trends Plant Sci. 12(3): 106–117.
Google Scholar
Podwyszyńska M., Niedoba K., Korbin M., Marasek A. 2006. Somaclonal variation in micropropagated tulips determined by phenotype and DNA markers. Acta Hort. 714: 211-220.
Google Scholar
Podwyszyńska M., Pluta S. 2019. In vitro tetraploid induction of the blackcurrant (Ribes nigrum L.) and preliminary phenotypic observations. Zemdirbyste-Agriculture, 106(2), 151-158.
Google Scholar
Reed B.M., Hummer K.E. 2002. Cryopreservation of Ribes. W: Towill L.E., Bajaj Y.P.S. (red.), Cryopreservation of Plant Germplasm II. Biotech. in Agriculture and Forestry 50: 323–343.
Google Scholar
Sedlák J., Paprštein F. 2012. In vitro establishment and proliferation of red currant cultivars. Hort. Sci. 39: 21–25.
Google Scholar
Wainwright H., Flegmann A.W. 1986. Studies on the micropropagation of Ribes species. Acta Horticulturae 183: 315–322.
Google Scholar
Welander M. 1985. Micropropagation of gooseberry, Ribes grossularia. Sci. Hort. 26(3): 267–272.
Google Scholar
Zabeau M., Vos P., 1993. Selective restriction fragment amplification: a general method for DNA fingerprinting. European Patent Application 92402629.7, Publication number 0 534 858 A1.
Google Scholar
Autorzy
Danuta Kucharskadanuta.kucharska@inhort.pl
Instytut Ogrodnictwa, Zakład Biologii Stosowanej, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3 96‒100 Skierniewice Poland
http://orcid.org/0000-0002-9635-967X
Autorzy
Danuta WójcikInstytut Ogrodnictwa, Zakład Biologii Stosowanej, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3 96‒100 Skierniewice Poland
https://orcid.org/0000-0002-3556-8080
Autorzy
Aleksandra TrzewikInstytut Ogrodnictwa, Zakład Biologii Stosowanej, ul. Konstytucji 3 Maja 1/3 96‒100 Skierniewice Poland
https://orcid.org/0000-0003-0378-5440
Statystyki
Abstract views: 195PDF downloads: 233 PDF downloads: 20
Licencja
Prawa autorskie (c) 2020 Danuta Kucharska
Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa – Na tych samych warunkach 4.0 Miedzynarodowe.
Z chwilą przekazania artykułu, Autorzy udzielają Wydawcy niewyłącznej i nieodpłatnej licencji na korzystanie z artykułu przez czas nieokreślony na terytorium całego świata na następujących polach eksploatacji:
- Wytwarzanie i zwielokrotnianie określoną techniką egzemplarzy artykułu, w tym techniką drukarską oraz techniką cyfrową.
- Wprowadzanie do obrotu, użyczenie lub najem oryginału albo egzemplarzy artykułu.
- Publiczne wykonanie, wystawienie, wyświetlenie, odtworzenie oraz nadawanie i reemitowanie, a także publiczne udostępnianie artykułu w taki sposób, aby każdy mógł mieć do niego dostęp w miejscu i w czasie przez siebie wybranym.
- Włączenie artykułu w skład utworu zbiorowego.
- Wprowadzanie artykułu w postaci elektronicznej na platformy elektroniczne lub inne wprowadzanie artykułu w postaci elektronicznej do Internetu, lub innej sieci.
- Rozpowszechnianie artykułu w postaci elektronicznej w internecie lub innej sieci, w pracy zbiorowej jak również samodzielnie.
- Udostępnianie artykułu w wersji elektronicznej w taki sposób, by każdy mógł mieć do niego dostęp w miejscu i czasie przez siebie wybranym, w szczególności za pośrednictwem Internetu.
Autorzy poprzez przesłanie wniosku o publikację:
- Wyrażają zgodę na publikację artykułu w czasopiśmie,
- Wyrażają zgodę na nadanie publikacji DOI (Digital Object Identifier),
- Zobowiązują się do przestrzegania kodeksu etycznego wydawnictwa zgodnego z wytycznymi Komitetu do spraw Etyki Publikacyjnej COPE (ang. Committee on Publication Ethics), (http://ihar.edu.pl/biblioteka_i_wydawnictwa.php),
- Wyrażają zgodę na udostępniane artykułu w formie elektronicznej na mocy licencji CC BY-SA 4.0, w otwartym dostępie (open access),
- Wyrażają zgodę na wysyłanie metadanych artykułu do komercyjnych i niekomercyjnych baz danych indeksujących czasopisma.
Inne teksty tego samego autora
- prof. dr hab. Stanisław Pluta , Danuta Kucharska, Łukasz Seliga , Ocena potencjału genetycznego wybranych genotypów borówki wysokiej (Vaccinium corymbosum L.) w oparciu o czynnikowy układ krzyżowań , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 286 (2019): Wydanie specjalne
- dr inż. Agnieszka Masny , Danuta Kucharska, Monika Mieszczakowska-Frąc, Anita Kuras, Edward Żurawicz, Badania nad możliwością poszerzenia zmienności genetycznej maliny właściwej (Rubus idaeus) pod względem pory dojrzewania i jakości owoców , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 286 (2019): Wydanie specjalne
- dr inż. Danuta Kucharska , Danuta Wójcik, Stanisław Pluta, Łukasz Seliga, Lucyna Ogórek, Barbara Wiosna, Stanisław Bodek, Analiza czynników warunkujących organogenezę agrestu (Ribes grossularia L.) w kulturach in vitro i in vivo oraz ocena genetyczna i fenotypowa otrzymanego materiału , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 286 (2019): Wydanie specjalne
Podobne artykuły
- Edyta Paczos-Grzęda, Katarzyna Kruk, Sylwia Okoń, Ocena wewnątrzgatunkowego podobieństwa genetycznego Avena fatua L. w oparciu o polimorfizm DNA , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 252 (2009): Wydanie regularne
- Agnieszka Grądzielewska, Edyta Paczos-Grzęda, Daniela Gruszecka, Zastosowanie metod RAPD i ISSR do oceny podobieństwa genetycznego greckich form Dasypyrum villosum (L.) P. Candargy , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 253 (2009): Wydanie regularne
- Aleksandra Pietrusińska, Paweł Cz. Czembor, Ocena wybranych metod izolacji DNA pod względem ich przydatności w hodowli pszenicy , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 244 (2007): Wydanie regularne
- Dorota Michałowska, Agnieszka Przewodowska, Włodzimierz Przewodowski, Oksana Olejnik, Joanna Piskorz, Bank Genów Ziemniaka in vitro w Boninie , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 290 (2020): Wydanie specjalne
- Edyta Paczos-Grzęda, Maria Chrząstek, Sylwia Okoń, Agnieszka Grądzielewska, Danuta Miazga, Zastosowanie markerów ISSR do analizy wewnątrzgatunkowego podobieństwa genetycznego Avena sterilis L. , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 252 (2009): Wydanie regularne
- Patrycja Siedlarz, Sławomir Bany, Krystyna Rybka, Zmiany ilościowe metylacji DNA indukowane przez światło monochromatyczne u regenerantów jęczmienia uzyskanych na drodze androgenezy , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 288 (2020): Wydanie regularne
- Janusz Rogacki, Zofia Bulińska-Radomska, Jakub Dzienkiewicz, Józef Adamaczyk, Henryk Cygert, Zróżnicowanie genetyczne linii wsobnych kukurydzy a plonowanie odmian mieszańcowych , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 253 (2009): Wydanie regularne
- Małgorzata Lesińska, Danuta Sekrecka, Czynniki indukujące tuberyzację ziemniaka w warunkach in vitro — przegląd literatury , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 243 (2007): Wydanie regularne
- Agnieszka Przewodowska, Dorota Michałowska, Joanna Piskorz, Paulina Buryło, Zasoby genowe ziemniaka tetraploidalnego in vitro i ich wykorzystanie w hodowli , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 283 (2018): Wydanie specjalne
- Krzysztof Kowalczyk, Sylwia Okoń, Analiza zmienności allelicznej w locus Xgwm261 w odmianach pszenicy zwyczajnej (Triticum aestivum L.) zarejestrowanych w Polsce w latach 1978–2006 , Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin: Nr 252 (2009): Wydanie regularne
Możesz również Rozpocznij zaawansowane wyszukiwanie podobieństw dla tego artykułu.
