Antraknoza (Colletotrichum coccodes) nowym zagrożeniem plantacji ziemniaka

Jerzy Osowski

j.osowski@ihar.edu.pl
Instytut Hodowli i Aklimatyzacji Roślin, Radzików, Zakład Nasiennictwa i Ochrony Ziemniaka, Bonin (Poland)

Abstrakt

Antraknoza ziemniaka jest chorobą skórki bulw i liści ziemniaka wywoływaną przez grzyba Colletotrichum coccodes (Wallr.) S. J. Hughes (synonimy C. atramentarium (Berk. & Br. Taub) and C. phomoides). Jest chorobą powszechnie występującą w większości rejonów uprawy ziemniaka na świecie i może powodować straty plonu na odmianach podatnych sięgające do 30%–75%. Objawy antraknozy (C. coccodes) mogą występować na wszystkich częściach podziemnych (bulwy potomne, stolony i korzenie), podstawie łodygi i na liściach. Cechą charakterystyczną antraknozy ziemniaka jest występowanie małych czarnych sklerocjów na korzeniach, łodygach, rozłogach i bulwach potomnych zakażonych roślin. Stosunkowo małe znaczenie antraknozy wzrosło po części z powodu rosnącego rynku ziemniaków świeżych i ziemniaków półprzetworzonych wynikającego ze wzrostu popytu na wysokiej jakości ziemniaki myte.


Słowa kluczowe:

Colletotrichum coccodes, antraknoza, objawy

Andrivon D., Ramage K., Guérin C., Lucan M., Jouan B. 1997. Distribution and fungicide sensitivity of Colletotrichum coccodes in French potato-producing areas. Plant Pathology 46: 722 — 728.
Google Scholar

Andrivon D., Lucas J.M., Guérin C., Jouan B. 1998. Colonization of roots, stolons, tubers and stems of various potato (Solanum tuberosum) cultivars by the black dot fungus Colletotrichum coccodes. Plant Pathology 47: 440 — 445.
Google Scholar

Anonymous 1998. Quality. Eyewitness 1, 13.
Google Scholar

Barkdoll A. W., Davis J. R. 1992. Distribution of Colletotrichum coccodes in Idaho and variation in pathogenicity on potato. Plant Disease 76: 131 —135.
Google Scholar

Blakeman J. P., Hornby D. 1966. The persistence of Colletotrichum coccodes and Mycosphaerella ligulicola in soil, with special reference to sclerotia and conidia. Transactions of the British Mycological Society 49: 227 — 440.
Google Scholar

Christ B. J. 1998. Potato diseases in Pennsylvania. Pennsylvania State University: 14.
Google Scholar

Cullen D. W., Lees A. K., Toth I. K., Duncan J. M. 2001. Conventional PCR and real-time quantitative PCR detection of Helminthosporium solani in soil and on potato tubers. European Journal of Plant Pathology 107: 387 — 398.
Google Scholar

Cullen D. W., Lees A. K., Toth I. K., Duncan J. M. 2002. Detection of Colletotrichum coccodes from soil and potato tubers by conventional PCR and real-time quantitative PCR. Plant Pathology 51: 281 — 292.
Google Scholar

Dashwood E. P., Fox R. A., Perry D. A. 1992. Effect of inoculum source on root and tuber infection by potato blemish disease fungi. Plant Pathology 41: 215 — 223.
Google Scholar

Denner F. D. N., Marais L. 1989. Silver scurf and anthracnose on potatoes. South African Journal of Science 85: 673.
Google Scholar

Denner F. D. N., Millard C. P., Geldenhuys A., Wehner F. C. 1997. Treatment of seed potatoes with prochloraz for simultaneous control of silver scurf and black dot on daughter tubers. Potato Research 40: 221 — 227.
Google Scholar

Denner F. D. N., Millard C. P., Wehner F. C. 1998. The effect of seed and soil-borne inoculum of Colletotrichum coccodes on the incidence of black dot on potatoes. Potato Research 41: 51 — 56.
Google Scholar

Denner F. D. N., Millard C. P., Wehner F. C. 2000. Effect of soil solarization and mouldboard ploughing on black dot of potato, caused by Colletotrichum coccodes. Potato Research 43: 195 — 201.
Google Scholar

Dickson B. T. 1926. The black dot disease of potato. Phytopathology 16: 23 – 40.
Google Scholar

Dillard H. R. 1988. Influence of temperature, pH, osmotic potential, and fungicide sensitivity on germination of conidia and growth from sclerotia of Colletotrichum coccodes in vitro. Phytopathology 78: 1357 — 1361.
Google Scholar

Dillard H. R. 1992. Colletotrichum coccodes: the pathogen and its hosts. In: Bailey J. A, Jeger M. J, eds. Colletotrichum: Biology, Pathology and Control. Wallingford, UK: CAB International: 225 — 236.
Google Scholar

Dillard H.R., Cobb A.C. 1998. Survival of Colletotrichum coccodes in infected tomato tissue and in soil. Plant Disease 82: 235 — 238.
Google Scholar

Gans P. T., Vaughan J. E., Thomas J. E. 2002. The evaluation of potato cultivar resistance to fungal diseases causing tuber blemishes. In: Crop Protection in Northern Britain. Farnham, Surrey, UK: British Crop Protection Council: 263 — 268.
Google Scholar

Errampalli D., Saunders J., Cullen D. W. 2001. A PCR-based method for detection of potato pathogen, Helminthosporium solani, in silver scurf infected tuber tissue and soils. Journal of Microbiological Methods 44: 59 — 68.
Google Scholar

Firman D. M., Allen E. J. 1993. Effects of windrowing, irrigation and defoliation of potatoes on silver scurf (Helminthosporium solani) disease. Journal of Agricultural Science 121: 47 — 53.
Google Scholar

Gudmestad N. 2003. NDSU Plant Pathologists Focus On Black Dot http://www.ext.nodak.
Google Scholar

edu/extnews/newsrelease/2003/041003/agcomm@ndsuext.nodak.edu.
Google Scholar

Hardy C. E., Burgess P.J., Pringle R.T. 1997. The effect of condensation on sporulation of Helminthosporium solani on potato tubers infected with silver scurf and held in simulated store conditions. Potato Research 40: 169 — 180.
Google Scholar

Harding R., Wicks T. 2007. What is black dot? Australia Potato Industry, February: 28 — 29.
Google Scholar

Harrison D.E., 1963. Black dot disease of potato. Journal of Agriculture Victoria 61, 573 — 576.
Google Scholar

Hide G. A., Boorer K. J., Hall S. M. 1994. Effects of watering potato plants before harvest and of curing conditions on development of tuber diseases during storage. Potato Research 37, 169 — 172.
Google Scholar

Hooker W. J. 1981. Compendium of Potato Diseases. American Phytopathological Society: 55 — 56.
Google Scholar

Honeycutt C. W., Clapham W. M., Leach S. S. 1996. Crop rotation and N fertilization effects on growth, yield, and disease incidence in potato. Amer. Potato J. 73: 45 — 61.
Google Scholar

Jellis G. J., Taylor G. S. 1974. The relative importance of silver scurf and black dot: two disfiguring diseases of potato tubers. ADAS Quarterly Review 14: 53 — 61.
Google Scholar

Johnson D. A. 1994. Effect of foliar infection caused by Colletotrichum coccodes on yield of Russett Burbank potato. Plant Disease 78: 1075 — 1078.
Google Scholar

Johnson D. A., Miliczky E. R. 1993. Effects of wounding and wetting duration on infection of potato foliage by Colletotrichum coccodes. Plant Disease 77: 13 — 17.
Google Scholar

Johnson D. A., Rowe R. C., Cummings T. F. 1997. Incidence of Colletotrichum coccodes in certified potato seed tubers planted in Washington State. Plant Disease 81: 1199 — 1202.
Google Scholar

Komm D. A., Stevenson W. R. 1978. Tuber-borne infection of Solanum tuberosum ‘Superior’ by Colletotrichum coccodes. Plant Disease Reporter 62: 682 — 687.
Google Scholar

Lees A. K., Hilton A. J. 2003. Black dot (Colletotrichum coccodes): an increasingly important disease of potato. Plant Pathology 52: 3 — 12.
Google Scholar

Mohan S. K., Davis J. R. 1987. Pathogenic potential of Colletotrichum coccodes on potato: some new evidence. Amer. Potato J. 64: 449.
Google Scholar

Mohan S.K., Davis J.R., Sorensen L.H., Schneider A.T. 1992. Infection of aerial parts of potato plants by Colletotrichum coccodes and its effects on premature vine death and yield. Amer. Potato J. 69, 547 — 559.
Google Scholar

Mordue J. E. M. 1967. Colletotrichum coccodes. CMI Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria, no. 131. Kew, UK: Commonwealth Agricultural Bureau.
Google Scholar

Nitzan N. 2006. Colonization of potato plants after aerial infection by Colletotrichum coccodes, causal agent of potato black dot. Plant Disease August 2006: 999 — 1003.
Google Scholar

Pringle R. T., Robson K. 1996. Storage of seed potatoes in pallet boxes. 1. The role of tuber surface moisture on the population of Erwinia bacteria. Potato Research 39: 205 — 222.
Google Scholar

Raid R. N., Pennypacker S. P. 1987. Weeds as hosts for Colletotrichum coccodes. Plant Disease 71, 643 — 646.
Google Scholar

Read P. J., Hide G. A. 1995 a. Development of black dot disease [Colletotrichum coccodes (Wallr.) Hughes] and its effects on the growth and yield of potato plants. Annals of Applied Biology 127: 57 — 72.
Google Scholar

Read P. J., Hide G. A., 1995 b. Effects of fungicides on the growth and conidial germination of Colletotrichum coccodes and on the development of black dot disease of potatoes. Annals of Applied Biology 126: 437 — 447.
Google Scholar

Read P. J., Storey R. M. J., Hudson D. R. 1995 a. A survey of black dot and other fungal tuber blemishing diseases in British potato crops at harvest. Annals of Applied Biology 126: 249 — 258.
Google Scholar

Tsror (Lahkim) L., Erlich O., Hazanovsky M. 1999. Effect of Colletotrichum coccodes on potato yield, tuber quality, and stem colonization during spring and autumn. Plant Disease 83: 561 — 565.
Google Scholar

Tsror (Lahkim) L., Erlich O., Hazanowsky M., Peretz I. 1994. Colletotrichum on potato in Israel, is it a new disease? Phytoparasitica 22: 88.
Google Scholar

Uribe E., Loria R. 1994. Response of Colletotrichum coccodes to fungicides in vitro. Amer. Potato J. 71: 455 — 465.
Google Scholar

Wnękowski S., Błaszczak W. 1997. Choroby ziemniaka. p. 505-535. In: „Ochrona Roślin” (J. Kochman, W. Węgorek, eds.). Plantpress Kraków.
Google Scholar

Zitter T. 2001. Black dot. http://vegetablemdonline.ppath.cornell.edu/factsheets/Potato_BlkDot.htm.
Google Scholar

Pobierz


Opublikowane
03/31/2009

Cited By / Share

Osowski, J. (2009) „Antraknoza (Colletotrichum coccodes) nowym zagrożeniem plantacji ziemniaka”, Biuletyn Instytutu Hodowli i Aklimatyzacji Roślin, (251), s. 243–251. doi: 10.37317/biul-2009-0099.

Autorzy

Jerzy Osowski 
j.osowski@ihar.edu.pl
Instytut Hodowli i Aklimatyzacji Roślin, Radzików, Zakład Nasiennictwa i Ochrony Ziemniaka, Bonin Poland

Statystyki

Abstract views: 85
PDF downloads: 67


Licencja

Prawa autorskie (c) 2009 Jerzy Osowski

Creative Commons License

Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa – Na tych samych warunkach 4.0 Miedzynarodowe.

Z chwilą przekazania artykułu, Autorzy udzielają Wydawcy niewyłącznej i nieodpłatnej licencji na korzystanie z artykułu przez czas nieokreślony na terytorium całego świata na następujących polach eksploatacji:

  1. Wytwarzanie i zwielokrotnianie określoną techniką egzemplarzy artykułu, w tym techniką drukarską oraz techniką cyfrową.
  2. Wprowadzanie do obrotu, użyczenie lub najem oryginału albo egzemplarzy artykułu.
  3. Publiczne wykonanie, wystawienie, wyświetlenie, odtworzenie oraz nadawanie i reemitowanie, a także publiczne udostępnianie artykułu w taki sposób, aby każdy mógł mieć do niego dostęp w miejscu i w czasie przez siebie wybranym.
  4. Włączenie artykułu w skład utworu zbiorowego.
  5. Wprowadzanie artykułu w postaci elektronicznej na platformy elektroniczne lub inne wprowadzanie artykułu w postaci elektronicznej do Internetu, lub innej sieci.
  6. Rozpowszechnianie artykułu w postaci elektronicznej w internecie lub innej sieci, w pracy zbiorowej jak również samodzielnie.
  7. Udostępnianie artykułu w wersji elektronicznej w taki sposób, by każdy mógł mieć do niego dostęp w miejscu i czasie przez siebie wybranym, w szczególności za pośrednictwem Internetu.

Autorzy poprzez przesłanie wniosku o publikację:

  1. Wyrażają zgodę na publikację artykułu w czasopiśmie,
  2. Wyrażają zgodę na nadanie publikacji DOI (Digital Object Identifier),
  3. Zobowiązują się do przestrzegania kodeksu etycznego wydawnictwa zgodnego z wytycznymi Komitetu do spraw Etyki Publikacyjnej COPE (ang. Committee on Publication Ethics), (http://ihar.edu.pl/biblioteka_i_wydawnictwa.php),
  4. Wyrażają zgodę na udostępniane artykułu w formie elektronicznej na mocy licencji CC BY-SA 4.0, w otwartym dostępie (open access),
  5. Wyrażają zgodę na wysyłanie metadanych artykułu do komercyjnych i niekomercyjnych baz danych indeksujących czasopisma.